测定意义：

GR是广泛存在于真核和原核生物中的一种黄素蛋白氧化还原酶，是谷胱甘肽氧化还原循环的关键酶之一（通常昆虫中GR被TrxR取代）。GR催化NADPH还原GSSG生成GSH，有助于维持体内GSH/GSSG比值。GR在氧化胁迫反应中对活性氧清除起关键作用，此外GR还参与抗坏血酸－谷胱甘肽循环途径。

测定原理：

GR能催化NADPH还原GSSG再生GSH，同时NADPH脱氢生成NADP⁺；NADPH在340 nm有特征吸收峰，相反NADP⁺在该波长无吸收峰；通过测定340 nm吸光度下降速率来测定NADPH脱氢速率，从而计算GR活性。

组成：

试剂二：粉剂×2瓶，-20℃保存。临用前加入3 ml蒸馏水，混匀。

试剂三：粉剂×2支，-20℃保存。临用前加入1.5 ml蒸馏水，混匀。

自备仪器和用品：

紫外分光光度计、低温离心机、水浴锅、移液器、1ml石英比色皿和蒸馏水

粗酶液提取：

1. 组织：按照组织质量（g）：提取液体积(ml)为1：5~10的比例（建议称取约0.1g组织，加入1ml试剂一）进行冰浴匀浆。8000g，4℃离心15min，取上清，置冰上待测。

2. 细菌、真菌：按照细胞数量（10⁴个）：提取液体积（ml）为500~1000：1的比例（建议500万细胞加入1ml试剂一），冰浴超声波破碎细胞（功率300w，超声3秒，间隔7秒，总时间3min）；然后8000g，4℃，离心15min，取上清置于冰上待测。

3. 血清等液体：直接测定。

操作步骤：

1. 分光光度计预热30 min，调节波长到340 nm，蒸馏水调零。

2. 试剂一置于25℃（普通物质）或者37℃（哺乳动物）中预热30min。

3. 测定管：取1ml石英比色皿，依次加入50μl试剂三，100μl试剂二， 750μl试剂一，100μl上清液，混匀，于340nm迅速测定初始吸光度和180 s吸光度，记为A测1和A测2，△A测定管= A测1﹣A测2。(注意加完上清液后迅速混匀测定)

计算公式：

(1). 按蛋白浓度计算

活性单位定义：在一定温度中，pH8.0条件下，每毫克蛋白每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GR酶活(nmol/min/mg prot)= [ △A测定管÷ε÷d×V反总×10⁹]÷[Cpr×V样]÷T

= 536×△A测定管÷Cpr

(2). 按样本质量计算

活性单位定义：在一定温度中，pH8.0条件下，每克样本每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GR酶活(nmol/min/g 鲜重)= [ △A测定管÷ε÷d×V反总×10⁹] ÷(W×V样÷V样总)÷T

= 536×△A测定管÷W

(3) 按细胞数量计算

活性单位定义：在一定温度中，pH8.0条件下，每10⁴个细胞每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GR酶活(nmol/min/10⁴ cell)= [ △A测定管÷ε÷d×V反总×10⁹] ÷(细胞数量×V样÷V样总)÷T            

= 536×△A测定管÷细胞数量

（4）按液体体积计算

活性单位定义：在一定温度中，pH8.0条件下，每毫升液体每分钟催化1nmol NADPH氧化为1个酶活单位。

GR酶活(nmol/min/ml)= [ △A测定管÷ε÷d×V反总×10⁹]÷×V样÷T

= 536×△A测定管

ε：NADPH摩尔消光系数6.22×10³L/mol/cm；V反总：反应体系总体积，1000μl=0.001 L；10⁶：1 mol=1×10⁶μmol； Cpr：上清液蛋白浓度（mg/ml）；V样：加入反应体系中上清液体积，100μl =0.1 ml；V样总：加入提取液体积，1ml；W，样本质量，g；T：反应时间，3 min。

注意事项：

（1）样品处理等过程均需要在冰上进行，且须在当日测定酶活力，匀浆液避免反复冻融；

（2）试剂二和试剂三须现配现用，配制完后，置于冰上，未使用完的4℃保存，三天内使用完。

（3）测定前须先用1～2个样做预实验，哺乳动物组织一般须用试剂一稀释2～5倍。

（4）细胞中GR活性测定时，细胞数目须在300万-500万之间，细胞中GR的提取时可加试剂一后研磨或超声波处理，不能用细胞裂解液处理细胞。