 
         
                    果胶裂解酶(PL)检测试剂盒(分光光度法50T/24S)
| 货号 | SH0506 | 售价(元) | 660 | 
| 规格 | 50T/24S | CAS号 | 
- 产品简介
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| 货号 | 名称 | 规格 | 
| SH0506 | 果胶裂解酶(PL)检测试剂盒(分光光度法50T/24S) | 50管/24样 | 
测定意义:
果胶裂解酶(EC4.2.2.10)是果胶酶的重要组成部分,是一种能降解植物细胞壁,导致植物组织软化甚至死亡的解聚酶,来源比较广泛,主要来源于微生物,可用于果汁、果酒的澄清,提高水果出汁率,植物病毒的纯化,纸浆的漂白和纺织品的生物精炼,在减少环境污染和降低能源消耗方面具有潜在的应用价值。
测定原理:
果胶裂解酶作用于果胶中的α-1,4糖苷键,生成在还原端C4和C5之间位置具有不饱和键的不饱和寡聚半乳糖醛酸,在235nm处有特征吸收峰。
试剂组成和配制:
| 产品名称 | SH0506-50T/24S | Storage | 
| 提取液:液体 | 50ml | 4℃ | 
| 试剂一:液体 | 15ml | 4℃ | 
| 试剂二:液体 | 15ml | 4℃ | 
| 试剂三:液体 | 15ml | 4℃ | 
| 说明书 | 一份 | |
自备仪器和用品:
天平、低温离心机、紫外分光光度计、1 ml石英比色皿、恒温水浴锅。
酶液提取:
1、组织:按照组织质量(g):提取液体积(ml)为1:5~10的比例(建议称取约0.1g组织,加入1ml提取液),进行冰浴匀浆。10000g ,4℃离心10min,取上清,置冰上待测。
2、细菌、真菌:按照细胞数量(104个):提取液体积(ml)为500~1000:1的比例(建议500万细胞加入1ml提取液),冰浴超声波破碎细胞(功率300w,超声3秒,间隔7秒,总时间3min);然后10000g,4℃离心10min,取上清置于冰上待测。
3、培养液:直接测定。
测定操作表:
| 
 | 对照管 | 测定管 | 
| 试剂一(μl) | 
 | 600 | 
| 试剂二(μl) | 600 | 
 | 
| 40℃温育3min | ||
| 酶液(μl) | 100 | 100 | 
| 混匀,40℃反应30min | ||
| 试剂三(μl) | 300 | 300 | 
| 混匀,对照管调零,1ml石英比色皿测定235nm处吸光值A。 | ||
酶活性计算公式:
1. 组织中PL活性
(1)按照蛋白浓度计算
酶活性定义:在40℃,pH5.5条件下,每毫克蛋白每分钟分解果胶产生1nmol不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位。
PL活性(nmol/min/mg prot)= A÷(ε×d)×V反总÷(V样×Cpr)÷T
= 64.1×A÷Cpr
(2)按照样本质量计算
酶活性定义:在40℃,pH5.5条件下,每克组织每分钟分解果胶产生1nmol不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位。
PL活性(nmol/min/g 鲜重)= A÷(ε×d)×V反总÷(V样×W÷V样总)÷T
= 64.1×A÷W
2. 细胞PL活性
酶活性定义:在40℃,pH5.5条件下,每104个细胞每分钟分解果胶产生1nmol不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位。
PL活性(nmol/min/104cell)= A÷(ε×d)×V反总÷(V样×细胞数量÷V样总)÷T
= 64.1×A÷细胞数量
3. 培养液PL活性
酶活性定义:在40℃,pH5.5条件下,每毫升培养液每分钟分解果胶产生1nmol不饱和半乳糖醛酸所需的酶量为一个酶活力单位。
PL活性(nmol/min/ml)= A÷(ε×d)×V反总÷V样÷T
= 64.1×A
ε:不饱和半乳糖醛酸摩尔消光系数:5200L/mol/cm;d:比色皿光径,1cm;V反总:反应总体积,1ml;V样:反应体系中样本体积,0.1ml;V样总:加入提取液体积,1ml;Cpr:样本蛋白浓度,mg/ml;W,样本质量,g;T:反应时间,30min
 
        